凤凰彩票 【指南与共识】支气管肺泡灌洗液细胞形态学检验中国共识（2023版）-个人总结
支气管肺泡灌洗液细胞形态学检验中国共识2020版-总结
支气管肺泡灌洗术及其标本处理与检测
支气管肺泡灌洗液（BALF）是通过纤维支气管镜对支气管以下肺段、亚肺段水平用无菌生理盐水反复灌洗，回收获取的肺泡表面衬液样本。BALF的细胞形态学、病原学、免疫学及分子生物学等一系列检查，在呼吸系统疾病，尤其是下呼吸道疾病的诊断、疗效观察、预后判断及发病机制研究等方面有着重要的意义。
1 检验目的
计数 BALF 中细胞数量（红细胞、有核细胞）及各类有核细胞所占百分比，准确识别BALF中各类细胞、寄生虫、结晶，发现细菌或真菌及其它有形成分，为临床对疾病的诊断、鉴别诊断、治疗效果和预后评估提供检验诊断依据。
2 标本采集
2.1 采集要求：
BALF由临床医生采集，在常规纤维支气管镜检查气道后，在活检和刷检前获得。合格的BALF标本：①回收率要＞40%。若选择下叶或其他肺叶肺段灌洗，回收率要＞30%。②不可混入血液，红细胞应＜10%,上皮细胞应＜5%。③多部位灌洗时，注明灌洗部位；注明灌洗液或冲洗液；较多时弃去第1管。④儿童BALF标本采集应严格按相应标准要求施行。
2.2 采集方法：
建站客服QQ：88888888
首先在灌洗的肺段经活检孔通过一细硅胶管注入2%利多卡因1～2ml，做灌洗肺段局部麻醉；然后将纤支镜顶端紧密楔入目标支气管段或亚段开口处，再经活检孔通过硅胶管快速注入37℃灭菌生理盐水。盐水总量100～250ml（一般不超过300ml），分3～5等份，每次25～60ml灌注，灌注后立即用50～100mmHg负压吸引回收灌洗液。
部位选择：病变局限者选择病变段；弥漫性病变者选择右肺中叶或左肺上叶舌段。
2.3 标本容器：
根据检测目的分装于不同的无菌试管或洁净试管中。用于病原学分析的标本需用无菌容器收集。常规细胞学分析需选择硅化的塑料容器或玻璃容器以减少细胞的黏附。
2.4 标本量：
成人应不少于10ml，儿童应不少于3ml。
如考虑为大气道疾病时，建议第1管回收液单独处理；非大气道疾病时，可将所有标本混合后送检。
标本采集结束后，贴好标本信息标签，室温2h内送检。
3 标本接收与处理
3.1 标本接收：标本送达检验科后，由工作人员在 Lis 系统扫码登记接收，对标识不明、采集量不足等不合格的标本，执行标本拒收程序。接收标本后应及时检验，室温可保存 4h，分析后的标本2～8℃环境中保存24h，不建议将保存 24h 后的标本再用于检测分析。
3.2 让步接收和让步检验：对于部分不合格标本，可执行让步接收与让步检验，与临床进行沟通，并在报告单中备注，说明标本状况对检验结果的影响。
图片
4.2 理学检查及细胞计数
4.2.1 理学检查：正常为无色透明液体；淡黄色或黄色多见于肺部感染或脓性标本；血性或棕褐色多见于急性弥漫性肺泡出血；乳白色或淘米水样，放置15～20min 后可见絮状颗粒物沉淀提示为肺泡蛋白沉积症。
4.2.2 细胞计数：
{jz:field.toptypename/}①将预处理的BALF标本混匀，取约5～10μl标本充入改良的Neubauer计数板或其它计数板中，静置1～2min后，计数细胞总数及有核细胞数（除外鳞状上皮细胞和纤毛柱状上皮细胞）；计数结果乘以预处理稀释倍数，以**×106/L单位报告。
②未经纱布过滤或DDT预处理的BALF标本，尽量将标本混匀，取无粘液标本充入改良的Neubauer计数板中，静置1~2min后，计数BALF中的细胞总数及有核细胞数，以**×10^6/L单位报告。
③若采用自动化分析仪体液模式分析，严格按照仪器操作说明书作业。
BALF必须严格预处理后方可进行体液模式检测分析，避免进样孔堵塞。
4.3 标本离心 离心的目的是将BALF中的有形成分进行浓缩，离心的目的是将 BALF 中的有形成分进行浓缩，相对离心力400g，离心时间5～10min，用一次性吸管去除上清液，留底部沉淀物用于制片。
4.4 制片 制片分为手工法和仪器法。
4.4.1 手工法制片：常用的制片方法有推片法、涂抹法和压拉法。根据标本性状合理选择制片方法，首选推片法。肺孢子菌、局灶性嗜酸性粒细胞增多常分布于黏液絮状物中，采用推片法 + 压拉法，或推片法 + 涂抹法等多种方法制片，可提高阳性检出率。注意在生物安全柜中制片，并在玻片上标记患者信息。制作涂片4～6张，必要时可增加制片数量。
4.4.1.1 推片法： 将离心后的沉淀物混匀，取5～10μl置于载玻片的右侧端，推片方法同外周血涂片，注意推片的速度和角度。为了提高异常细胞的检出率，可制备无尾厚片两张。
方法学评价：适用于标本黏液较少或经过预处理的标本；推片法制作的涂片头、体、尾分布清晰，体积较大的或成团分布的细胞常分布于涂片的两侧和尾部；涂片尾部的细胞易被推破。
4.4.1.2 涂抹法：用洁净小棒将标本均匀涂抹于载玻片上，涂片动作应轻柔利索，同方向涂抹，不要反向涂抹。
方法学评价：适用于有黏液絮状物的标本或不易离心沉淀的标本；涂抹法制作的涂片细胞分布不均，有的细胞易被黏液包裹，部分细胞结构不清，不利于分类计数。
4.4.1.3 压拉法：选少许黏液絮状标本，置于一张载玻片上，取另一张载玻片盖于标本之上，稍加压力均匀压开后，反向水平拉开，即成两张厚薄均匀的涂片。
方法学评价：适用于有黏液絮状物的标本或标本不易离心沉淀；压拉法制作的涂片一般较厚，染色较深；细胞易被黏液包裹，结构不清；部分细胞受外力挤压而破碎。
4.4.2 仪器法制片：采用细胞离心涂片机甩片，按仪器操作说明书规范操作。若标本有核细胞数显著增高时，可使用生理盐水适当稀释，将悬液有核细胞数稀释至（100 ～ 200）×106/L 为宜，部分标本稀释可达 10 ～ 200 倍 。
方法学评价：应用此方法制片，细胞分布均匀，结构清晰，利于形态辨识，可提高细胞学标本阳性检出率。
4.5 染色
4.5.1染色方法：常用的染色方法有瑞-吉染色法或瑞氏染色法、革兰氏染色法、抗酸或弱抗酸染色法、墨汁染色法、六胺银染色法、真菌荧光染色法、油红 O 染色法、糖原染色法、铁染色法及其他染色法等。
4.5.2染色步骤：BALF 常规细胞学常用瑞-吉染色法（同外周血染色方法），根据需要加选其他染色，如瑞-吉染色涂片检出疑似含铁血黄素细胞，可加做铁染色予以确证。染好的涂片用流水冲洗，尽量减少染料沉渣沉积，避免流水直接冲洗片膜，将冲洗后的涂片片尾向上，待涂片干燥后镜检。
4.6 阅片及细胞分类 BALF镜检法包括湿片直接镜检法和涂片染色镜检法，凤凰彩票app二者兼用可以提高阳性检出率。
4.6.1 湿片直接镜检：将离心后的沉淀物混匀，取混匀标本10～20μl，滴于载玻片上，盖上盖玻片，避免气泡，观察镜下有形成分，包括体积大的细胞、活体的纤毛柱状上皮细胞、寄生虫及结晶等。
4.6.2 涂片染色镜检：对于染色后的涂片，首先低倍镜观察全片，尤其在尾部观察有无成团、成片或体积较大的异常细胞，油镜下观察细胞结构，鉴定细胞性质；选择细胞分布均匀的部位，分类至少计数200~500个细胞（中性粒细胞、淋巴细胞、嗜酸细胞、嗜碱细胞、巨噬细胞等），分类结果以百分比报告。遇到细胞分布不均匀时，采用多点、多部位分类。
4.6.3 涂片染色镜检应正确识别有形成分：
图片
4.6.3.1 非肿瘤细胞：成熟红细胞、有核红细胞；中性粒细胞（图 1）、嗜酸性粒细胞、嗜碱性粒细胞、肥大细胞；淋巴细胞、反应性淋巴细胞、浆细胞；肺泡巨噬细胞（图 2）、尘细胞、含铁血黄素细胞、泡沫细胞、脂沉积巨噬细胞、吞噬异物的巨噬细胞；鳞状上皮细胞、纤毛柱状上皮细胞、杯状细胞、基细胞 / 储备细胞、Creola 小体、朗汉斯巨细胞。
4.6.3.2 恶性肿瘤细胞：非小细胞癌细胞（图 3，图 4）、小细胞癌细胞（图 5）；原始细胞、淋巴瘤细胞；恶性黑色素瘤细胞等。
图片
4.6.3.3 非细胞成分：柯斯曼螺旋体、石棉小体 /含铁小体、无定形颗粒或富磷脂蛋白聚集体、干酪样坏死颗粒、弹力纤维及结晶（夏科 - 莱登结晶、血红素结晶）等。
4.6.3.4 微生物与寄生虫：细菌、真菌及寄生虫。
图片
5 报告
图片
5.2.1 BALF常规报告：颜色、透明度、细胞总数、有核细胞计数、细胞分类计数百分比。
5.2.2 BALF细胞学报告 肿瘤细胞筛查建议采用分级报告，未查见恶性细胞、查见核异质细胞、查见可疑恶性细胞、查见恶性细胞。若能鉴别恶性细胞类别时，可以报告非小细胞癌细胞、小细胞癌细胞及淋巴瘤细胞等；对于其他特殊细胞及有形成分，建议描述其形态，必要时报告其数量。
5.3 有条件的单位推荐出具 BALF 常规细胞学检查图文报告
包括有核细胞计数及细胞分类、图像及形态学描述、解释和建议等。
5.3.1 图像：用图像采集系统在镜下选择涂片细胞分布、染色良好的部位，对诊断有价值的细胞及有形成分进行拍摄，选择代表性的图片用以图文报告。
5.3.2 形态学描述：对异型细胞、肿瘤细胞及其他特殊细胞进行必要的形态描述，包括细胞分布、细胞大小、胞质量、胞质着色、胞质内容物、核大小、核形、核染色质排列、核仁数量与大小等；对中性粒细胞或巨噬细胞吞噬细菌现象等进行描述；对其他有价值的有形成分进行必要的形态描述。
5.3.3 建议或提示：依据细胞形态特征，给出合理化建议或进一步检查的方向。对于发现的恶性细胞或可疑恶性细胞建议进一步做免疫细胞化学染色或结合其他检查；若考虑淋巴瘤细胞，建议结合病史及流式细胞术检查结果综合分析；若发现细菌或胞内菌，建议微生物培养等。
5.4 让步检验报告 在保证检验质量的前提下，对于纤毛柱状上皮细胞或鳞状上皮细胞 >5% 的标本，执行让步检验，细胞分类时不应将此类上皮细胞计入有核细胞百分比，以半定量形式表示（5%～10%为“+”，11%～20%为“++”，21%～30% 为“+++”，>30% 为“++++”），同时在报告中注明“取材不佳、上皮细胞明显增多”。对于有核细胞分布不均匀的涂片，报告时应选择具有对诊断疾病有价值的阳性指标（如中性粒细胞、嗜酸性粒细胞等），注明“局灶性分布”。
5.5 主动及时报告 检出具有特殊意义的成分以及其他可能影响临床诊疗活动的重要发现，如肺孢子菌、隐球菌、恶性肿瘤细胞等，应立即报告临床。
6 涂片保存
发出报告后，对涂片进行分类归档，妥善保管，保存时限按各实验室标准操作规程进行处置，一般保存 3 ～ 5 年。
7 生物参考区间
健康非吸烟成年人参考值：有核细胞数（90~260）×10^6/L，肺泡巨噬细胞 85%~96%，淋巴细胞 6%~15%，中性粒细胞≤ 3%，嗜酸粒细胞 <1%，鳞状上皮细胞 / 纤毛柱状上皮细胞≤ 5%。
8 生物安全防护
8.1 BALF标本的采集、运送必须符合生物安全要求，防止溢出。如标本溢出后，应该立即对污染的环境和设备进行消毒处理。
8.2 检验人员在处理 BALF 标本时，需做好个人防护，严格执行生物安全管理程序，对表明有传染性疾病的 BALF 标本按级别进行防护。
8.3 所有检查过的 BALF 标本及其它的废弃物，严格执行医疗废物处理流程。
9 临床意义
9.1 BALF称为 淋巴细胞增多型（即淋巴细胞为主型：淋巴细胞计数>15%，）、中性粒细胞增多型（即中性粒细胞为主型：中性粒细胞>3%）、嗜酸性粒细胞增多型（即嗜酸性粒细胞为主型：嗜酸性粒细胞>1%）和肥大细胞增多型（即肥大细胞为主型：肥大细胞 >0.5%）。
9.2 淋巴细胞数量及比例增高，多见于肉芽肿性肺病，如结节病和过敏性肺泡炎 (HP)、非特异性间质性肺炎（NSIP）、慢性尘肺、矽肺病、石棉肺、药物性肺病、职业病（例如慢性铍病）、克罗恩病、结缔组织疾病、药物反应、淋巴细胞性间质性肺炎(LIP)、隐源性机化性肺炎 (COP) 或淋巴瘤；此外，在肺结核、慢性炎症、病毒感染患者或吸烟者的样本中淋巴细胞可出现不同程度的增多。
9.3 嗜酸性粒细胞计数及比例增高，多见于过敏性哮喘、嗜酸性粒细胞性肺病、药物性肺炎、支气管炎、嗜酸性肉芽肿性多血管炎（EGPA）、过敏性支气管肺曲霉菌病、真菌、蠕虫、肺囊虫感染。
图片
9.4 中性粒细胞计数及比例增高，提示活动性肺泡炎，多见于急性肺损伤、吸入性肺炎、结缔组织疾病、韦格纳肉芽肿病、急性呼吸窘迫综合征（ARDS）或化脓性感染等。
图片
9.5 细胞分类以含铁血黄素细胞为主（铁染色确证），则提示慢性或隐匿性肺泡出血性疾病，如肺含铁血黄素沉着症或弥漫性肺泡损伤/出血、肺出血-肾炎综合征 (Goodpasture’s syndrome) 等。
图片
9.6 细胞分类以肺泡巨噬细胞为主，其他细胞计数正常或轻度增高，多见于间质性肺病（ILD），如脱屑性间质性肺炎 (DIP)、呼吸性细支气管炎伴间质性肺病 (RB-ILD) 或肺朗格汉斯细胞组织细胞增多症 (PLCH) 等。
图片
9.7 检出大量细菌或胞内菌（如球菌、杆菌，放线菌、奴卡菌、抗酸杆菌等），则建议结合其他染色或做细菌培养，鉴定致病菌。
图片
9.8 检出真菌及菌丝（常见真菌有隐球菌、曲霉菌、毛霉菌、马尔尼菲蓝状菌、荚膜组织胞浆菌等），建议真菌培养、鉴定致病菌；若考虑肺孢子菌（图6），建议加做六胺银染色或做其他相关检查。
图片
图片
曲霉菌
图片
9.9检出包涵体细胞，建议做病毒感染相关检查。
9.10检出寄生虫，提示寄生虫感染。
9.11检出大量无定形碎片颗粒或富磷脂蛋白聚集体，标本呈牛奶样，且无定形碎片颗粒糖原染色(PAS) 阳性，提示肺泡蛋白沉积症。
9.12检出石棉小体，提示接触过石棉纤维，建议结合影像学进一步明确。
9.13在支气管胆管瘘患者的 BALF 中，可检出胆红素结晶；在化脓性肺部感染或陈旧性出血的BALF 中，可检出血红素结晶。
9.14检出肿瘤细胞，则提示原发性肺癌或转移性肿瘤，建议结合免疫组化明确类型。
9.15检出原始细胞或淋巴瘤细胞，则提示白血病、淋巴瘤浸润，建议结合病史及流式细胞术等检查。
获取原文：
我用夸克网盘分享了「支气管肺泡灌洗液细胞形态学...验中国专家共识（2023）_君安医学细胞平台专家委员会.pdf」，点击链接即可保存。打开「夸克APP」在线查看，支持多种文档格式转换。链接：https://pan.quark.cn/s/f5fe8c08b013
图片
本站仅提供存储服务，所有内容均由用户发布，如发现有害或侵权内容，请点击举报。
备案号: